Anno di corso: 1

Crediti: 9
Crediti: 9
Crediti: 14
Crediti: 3
Tipo: Lingua/Prova Finale
Crediti: 3
Tipo: Altro

Anno di corso: 2

Crediti: 6
Crediti: 4
Crediti: 9
Crediti: 6
Crediti: 20
Crediti: 6
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 2
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente

Anno di corso: 3

Crediti: 26
Crediti: 6
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 2
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 2
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 1
Tipo: A scelta dello studente
Crediti: 6
Tipo: Lingua/Prova Finale

ANALISI BIOCHIMICO-CLINICHE

Scheda dell'insegnamento

Anno accademico di regolamento: 
2016/2017
Anno di corso: 
1
Anno accademico di erogazione: 
2016/2017
Tipo di attività: 
Obbligatorio
Crediti: 
6
Ciclo: 
Secondo Semestre
Ore di attivita' didattica: 
52

Moduli

Metodi di valutazione

Tipo di esame: 
Scritto e Orale Congiunti
Modalita' di verifica dell'apprendimento: 

Prova scritta: quiz a risposta multipla
Discussione della prova scritta mediante colloquio orale

Valutazione: 
Voto Finale

Obiettivi formativi

TECNICHE ANALITICHE: Strumenti di misura di laboratorio. Principi di base
e applicazioni delle principali tecniche impiegate: tecniche fotometriche,
tecniche elettroforetiche, esame emocromocitometrico ed esame dell’
urina, dosaggi enzimatici. Valutazione dei metodi analitici (praticabilità,
attendibilità e accuratezza). Cenni sugli animali da laboratorio.
ANALISI BIOCHIMICO CLINICHE: Profili d’organo: Metabolismo epatico di
glucidi, lipidi, proteine, alcool e bilirubina, ed analisi biochimico-cliniche
relative. Analisi biochimico-cliniche per l’esplorazione del metabolismo
glucidico. Metabolismo del tessuto adiposo. Biochimica clinica dei lipidi e
delle lipoproteine. Metabolismo del tessuto Muscolare e Cardiaco.
Marcatori di lesione miocardica. Metabolismo del tessuto Nervoso.
Metabolismo del globulo rosso. Anemie ed emoglobinopatie. Biochimica
clinica del rene ed equilibrio idroelettrolitico; le clearances renali, la
creatinina e l’urea. Interrelazioni metaboliche tra organi e tessuti.
Biochimica clinica dell’osso e metabolismo minerale. Ferro e
oligoelementi.
TECNICHE STRUMENTALI: Tecniche di separazione dei linfociti da sangue
intero. Tecniche di estrazione, purificazione, quantificazione e
conservazione del DNA e dell’RNA: principi teorici e aspetti pratici. Enzimi
di restrizione: aspetti teorici e applicazioni diagnostiche. Reazione di
retrotrascrizione. Reazione di amplificazione degli acidi nucleici (PCR):
parametri di amplificazione (denaturazione - ibridazione - estensione) e
reagenti della reazione. Identificazione dei prodotti di amplificazione
(elettroforesi su gel d’agarosio e sistemi di ibridazione). Tecniche di
identificazione di mutazioni geniche: metodi indiretti (Southern Blot,
DGGE, SSCP, PTT, CCM) e metodi diretti (RFLP, ASA, ASO).
Sequenziamento di prodotti di PCR. Tecniche di determinazione di acidi
nucleici virali (HCV, HBV, HIV).

Contenuti

Fornire agli studenti i principi di base della farmacologia generale e del meccanismo d’azione di alcuni dei principali farmaci. Fornire agli studenti i principi di base delle tecniche di rianimazione. Fornire agli studenti le principali conoscenze in materia di radio farmaci: loro classificazione, cinetica e preparazione per uso diagnostico.

Programma esteso

Tecniche Analitiche
Strumenti di misura di laboratorio. Principi di base e applicazioni delle
principali tecniche impiegate: tecniche fotometriche, tecniche
elettroforetiche, esame emocromocitometrico ed esame dell’urina,
dosaggi enzimatici. Valutazione dei metodi analitici (praticabilità,
attendibilità e accuratezza).
Cenni sugli animali da laboratorio.
Analisi Biochimico-Cliniche
Profili d’organo:
Metabolismo epatico di glucidi, lipidi, proteine, alcool e bilirubina ed
analisi biochimico-cliniche relative.
Analisi biochimico-cliniche per l’esplorazione del metabolismo glucidico.
Metabolismo del tessuto adiposo. Biochimica clinica dei lipidi e delle
lipoproteine. Metabolismo del tessuto Muscolare e Cardiaco. Marcatori di
lesione miocardica.
Metabolismo del tessuto nervoso.
Metabolismo del globulo rosso. Anemie ed emoglobinopatie.
Biochimica clinica del rene ed equilibrio idroelettrolitico; le clearances
renali, la creatinina e l’urea.
Interrelazioni metaboliche tra organi e tessuti.
Biochimica clinica dell’osso e metabolismo minerale. Ferro e
oligoelementi.
Equilibrio acido-base e suo monitoraggio biochimico-clinico.
Tecniche strumentali
Tecniche di separazione dei linfociti da sangue intero. Tecniche di
estrazione, purificazione, quantificazione e conservazione del DNA e dell’
RNA: principi teorici e aspetti pratici. Enzimi di restrizione: aspetti teorici
e applicazioni diagnostiche. Reazione di retrotrascrizione. Reazione di
amplificazione degli acidi nucleici (PCR): parametri di amplificazione
(denaturazione - ibridazione - estensione) e reagenti della reazione.
Identificazione dei prodotti di amplificazione (elettroforesi su gel d’
agarosio e sistemi di ibridazione). Tecniche di identificazione di mutazioni
geniche: metodi indiretti (Southern Blot, DGGE, SSCP, PTT, CCM) e
metodi diretti (RFLP, ASA, ASO). Sequenziamento di prodotti di PCR.
Tecniche di determinazione di acidi nucleici virali (HCV, HBV, HIV).

Bibliografia consigliata

SPANDRIO L. BIOCHIMICA CLINICA, ED SORBONA
SILIPRANDI N. TETTAMANTI G. BIOCHIMICA MEDICA ED PICCIN. Dispense
fornite dai docenti.

Metodi didattici

Lezioni frontali, esercitazioni.